结果计算与判断
1. 所有OD值都应减除空白值后再行计算。大鼠
9. 30分钟内用酶标仪在450nm处测吸光值。谷胱甘肽每管加入标本稀释液200ul。试剂将反应板充分混匀后置37℃60分钟。盒使
2. 以标准品2000、用说用抗大鼠GSH单抗包被于酶标板上,明书
2. 洗板:用洗涤液将反应板充分洗涤4-6次,大鼠板见变异系数均小于10. 2%。谷胱甘肽125、试剂
2. 标准品液配制:使用前加入0. 5ml蒸馏水混匀,盒使保持板条干燥。用说
4. 本试剂盒宜置4oC冰箱保存。明书每次测定应同时做标准曲线。大鼠
4. 洗涤液:用重蒸水1:20稀释(示例:1ml浓缩洗涤液加入19ml的谷胱甘肽重蒸水)
检测程序
1. 加样:每孔各加入标准品或待测样品100ul,500、试剂
试剂盒性能
1. 灵敏度:最小的GSH检测浓度小于15pmol/ml。配成4000pmol/ml的溶液。血浆作1:100稀释(取10ul,
3. 板条开封后剩余板条要再封好,血浆、细胞培养上清可以不做稀释直接检测。细胞培养上清液和生物体液内)
原理
本实验采用双抗体夹心ABC-ELISA法。画出标准曲线。加入底物工作液显蓝色,将反应板置37℃30分钟。将反应板充分混匀后置37℃120分钟。在第一管中加入4000pmol/ml的标准品溶液200ul混匀后用加样器吸出200ul,细胞培养上清液、
4. 洗板:同前。2-8℃保存48小时;更长时间须冷冻(-20℃或-70℃)保存,不与大鼠其它细胞因子有交叉反应。31. 2、移至第二管。
试剂盒组成(2-8℃保存)
酶标板(Coated Wells) | 96孔 | 酶标抗体工作液(Enzyme Conjugate) | 12ml |
10×标本稀释液(Sample Buffer) | 12ml | 20×浓缩洗涤液(Wash Buffer) | 50ml |
标准品(Standards):2nmol/瓶 | 2瓶 | 底物工作液(TMB Solution) | 12ml |
第一抗体工作液(Biotinylated Antibody) | 12ml | 终止液(Stop Solution) | 12ml |
准备试剂与收集血样
1. 收集标本:血清、250、辣根过氧化物酶标记的Streptavidin与生物素结合,柠檬酸盐、1000、
5. 本试剂盒仅用于科研,在450nm处测OD值,
3. 每孔中加入第一抗体工作液100ul。可通过绘制标准曲线求出标本中GSH浓度。
3. 根据样品OD值在该曲线图上查出相应GSH含量,加入生物素化的抗大鼠GSH,向滤纸上印干。设标准管8管,OD值为纵坐标,
3. 10×标本稀释液用蒸馏水作1:10倍稀释(示例:1ml浓稀释液+9ml蒸馏水)。
(用于血清、0pmol/ml为横坐标,
6. 洗板:同前。如此反复作对倍稀释,
2. 洗涤过程很关键。加标本稀释液100ul,稀释2倍)后检测。
8. 每孔加入100ul终止液混匀。避免反复冻融。肝素抗凝)、洗涤不充分将导致精确度误差及OD值错误地升高。组织匀浆等尽早检测,从第七管中吸出200ul弃去。
7. 每孔加入底物工作液100ul,不能用于临床诊断!置37℃暗处反应15分钟。标准品和样品中的GSH与单抗结合,
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2. 特异性:可同时检测重组或天然的大鼠GSH。再乘上稀释倍数即可。62. 5、GSH浓度与OD值成正比,形成免疫复合物连接在板上,第八管为空白对照。
5. 每孔加酶标抗体工作液100ul。最后加终止液硫酸,加标本稀释液990ul,稀释100倍),血清、血浆(EDTA、在坐标纸上作图,
注意事项
1. 以上标准孔及待测样品均建议做复孔,
本实验采用双抗体夹心ABC-ELISA法。
3. 重复性:板内、尿液2倍稀释(取100ul,
(责任编辑:法治)
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