试剂不匹配 | 一抗与组织种属,程中常A,题及降低甲醇浓度或者使用乙醇或异丙醇代替 |
转移时间不够 | 对于厚的原因胶以及高分子量蛋白需要延长转移时间 |
抗体染色不充分 | 增加抗体浓度,保证抗体的分析特异性 |
蛋白降解 | 使用新鲜制备的标本,选择其他二抗(特异性更强的程中常,去除聚集体 |
HRP含量过高 | 降低酶联二抗的题及浓度 |
但标本没有则可能是原因标本中不含靶蛋白或靶蛋白含量太低。一抗与二抗或/和底物与酶系统之间不匹配。分析延长孵育时间
酶失活 | 直接将酶和底物进行混合,程中常选择合适的题及封闭试剂(脱脂奶粉,其他操作过程不变,原因缩短转移时间 |
甲醇浓度过高 | 过高甲醇浓度会导致蛋白质与SDS分离,分析选择在有效期内、程中常避免出现干膜现象 |
曝光过度 | 缩短曝光时间 |
抗体与阻断蛋白有交叉反应 | 检测抗体与阻断蛋白的题及交叉反应性,可以减少非特异性条带 |
蛋白上样量过大 | 降低上样量 |
封闭剂中有聚集体 | 使用前过滤封闭试剂 |
HRP耦联二抗中有聚集体 | 过滤二抗试剂,原因二抗)浓度,工作液现配现用, |
HRP抑制剂 | 所用溶液和容器中避免含有叠氮化钠 |
抗体活性降低 | 选择在有效期内的抗体,洗涤液中加入Tween-20可减少交叉反应 |
没有阳性条带,同时会使凝胶收缩或变硬,并使用蛋白酶抑制剂 |
二聚体或多聚体存在 | 增加蛋白质变性过程及强度 |
抗体浓度过高 | 降低抗体(一抗、从而抑制高分子量蛋白的转移。避免长时间放置 |
封闭过度 | 减少封闭剂的量或缩短时间;换用不同封闭剂类型 |
曝光时间过短 | 延长曝光时间 |
条带位置不对;或有非特异性条带 色带) | 二抗的非特异性结合 | 增加一个对照:不加一抗,有活性的酶联物 |
标本中不含靶蛋白或靶蛋白含量太低 | 设置阳性对照,或者提高温度。延长孵育时间 |
标本中靶蛋白含量太低 | 增加标本上样量。或者阳性条带比较弱 | 抗体染色不充分 | 增加抗体浓度,即可验证背景是否由二抗系统来源。如果不显色则说明酶失活了。如果阳性对照有结果,酪蛋白等) |
二抗浓度过高 | 降低二抗浓度 |
检测过程中膜干燥 | 保证充分的反应液,Western Blot过程中常见的问题及可能原因分析 2011-08-10 17:49 · Chasel 常见的问题及可能原因分析 问题 | 可能原因 | 验证或解决办法 | 背景高 | 膜没有完全均匀湿透 | 使用100% 甲醇浸透膜5-10min | 洗膜不充分 | 增加洗液体积和洗涤次数 | 阻断不充分 | 增加封闭液孵育时间,选择无交叉反应的封闭剂。可考虑增加标本上样量解决靶蛋白含量低的原因。只针对重链的) | 一抗的特异性不够 | 使用单克隆或者亲和纯化的抗体,通过设置内参照可以验证二级检测系统的有效性 | 一抗失效 | 选择在有效期内抗体;并选择现配现用的工作液 | HRP抑制剂 | 所用溶液和容器中避免含有叠氮化钠 | 膜没有完全均匀湿透 | 使用100%甲醇浸透膜 | 靶蛋白分子量小于10Kd | 选择小孔径的膜,从而沉淀在凝胶中, 
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